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    PCR技術(shù)的原理與方法

    admin 2021-06-01 10:40:06 627閱讀

    PCR技術(shù)的原理與方法PCR技術(shù)的原理與方法

     PCR(Polymerase Chain Reaction)即聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng),是指在DNA聚合酶催化下,以母鏈DNA為模板,以特定引物為延伸起點(diǎn),通過(guò)變性、退火、延伸等步驟,體外復(fù)制出與母鏈模板DNA互補(bǔ)的子鏈DNA的過(guò)程。是一項(xiàng)DNA體外合成放大技術(shù),能快速特異地在體外擴(kuò)增任何目的DNA??捎糜诨蚍蛛x克隆,序列分析,基因表達(dá)調(diào)控,基因多態(tài)性研究等許多方面。

    PCR技術(shù)的基本原理

    一、PCR反應(yīng)成分:

    1、模板DNA;

    2、引物;

    3、四種脫氧核糖核苷酸;

    4、DNA聚合酶;

    5、反應(yīng)緩沖液、Mg2+等。

    二、PCR反應(yīng)基本步驟:

    1、變性(denaturation):通過(guò)加熱使模板DNA的雙鏈之間的氫鍵斷裂,雙鏈分開而成單鏈的過(guò)程,高溫使雙鏈DNA解離形成單鏈(94℃,30s)。

    2、退火(annealling):當(dāng)溫度降低時(shí),引物與模板DNA中互補(bǔ)區(qū)域結(jié)合成雜交分子,低溫下,引物與模板DNA互補(bǔ)區(qū)結(jié)合(55℃,30s)。

    3、延伸(extension):在DNA聚合酶、dNTPs、 Mg2+存在下,DNA聚合酶催化引物按5’→3’方向延伸,合成出與模板DNA鏈互補(bǔ)的DNA子鏈,中溫延伸,DNA聚合酶催化以引物為起始點(diǎn)的DNA鏈延伸反應(yīng)(70~72℃,30~60s) 

    以上述三個(gè)步驟為一個(gè)循環(huán),每一循環(huán)的產(chǎn)物均可作為下一個(gè)循環(huán)的模板,經(jīng)過(guò)n次循環(huán)后,目的DNA以2n的形式增加。

     

    PCR技術(shù)的原理與方法

    PCR擴(kuò)增的基本方法

     

    PCR技術(shù)的原理與方法

    PCR反應(yīng)的成分和作用

    總體積:一般為25μl~100μl

    一、無(wú)Mg2+buffer:由純水、kcl、Tris組成。Tris用于調(diào)節(jié)反應(yīng)體系pH值,使Taq酶在偏堿性環(huán)境中反揮活性。kcl可降低退火溫度,但不能超過(guò)50?mmol/L,否則會(huì)抑制DNA聚合酶活性。二、Mg2+:終濃度為1.5~2.0mmol/L,其對(duì)應(yīng)dNTP為200?μmol/L,注意Mg2+與dNTPs之間的濃度關(guān)系,由于dNTP與Taq酶竟?fàn)嶮g2+,當(dāng)dNTP濃度達(dá)到1?mmol/L時(shí)會(huì)抑制Taq酶的活性。?Mg2+能影響反應(yīng)的特異性和產(chǎn)率。、

    三、BSA:一般用乙?;腂SA,起著減少PCR管對(duì)Taq酶的吸附作用,對(duì)Taq酶有保護(hù)作用。

    四、底物(dNTPs):dNTPs具有較強(qiáng)酸性,其儲(chǔ)存液用NaOH調(diào)pH值至7.0~7.5,一般存儲(chǔ)濃度為 10 mmol/L,各成份以等當(dāng)量配制,反應(yīng)終濃度為20~200μmol/L。高濃度可加速反應(yīng),但同時(shí)增加錯(cuò)誤摻入和實(shí)驗(yàn)成本;低濃度可提高精確性,而反應(yīng)速度會(huì)降低。

    五、Taq酶:能耐95℃高溫而不失活,其最適pH值為8.3~8.5,最適溫度為75~80℃,一般用72℃。能催化以DNA單鏈為模板,以堿基互補(bǔ)原則為基礎(chǔ),按5’→3’方向逐個(gè)將dNTP分子連接到引物的3’端,合成一條與模板DNA互補(bǔ)的新的DNA子鏈。無(wú)3’→5’的外切酶活性,沒(méi)有校正功能。某種dNTP或Mg2+濃度過(guò)高,會(huì)增加其錯(cuò)配率。用量一般為0.5~5個(gè)單位/100μl。

    六、模板:PCR對(duì)模板DNA的純度不要求很高,但應(yīng)盡量不含有對(duì)PCR反應(yīng)有抑制作用的雜質(zhì)存在,如蛋白酶、核酸酶、TqaDNA聚合酶抑制劑、能與DNA結(jié)合的蛋白質(zhì)。模板DNA的量不能太高,否則擴(kuò)增可能不會(huì)成功,在此情況下可適當(dāng)稀釋模板。

    七、引物:引物濃度一般為0.1~0.5μmol/L,濃度過(guò)高會(huì)引起錯(cuò)配和非特異擴(kuò)增,濃度過(guò)低則得不到產(chǎn)物或產(chǎn)量過(guò)低。引物長(zhǎng)度一般15~30個(gè)堿基,引物過(guò)長(zhǎng)或過(guò)短都會(huì)降低特異性。其3’末端一定要與模板DNA配對(duì),末位堿基最好選用A、C、G(因T錯(cuò)配也能引發(fā)鏈的延伸)。

    引物G+C約占45~55%,堿基應(yīng)盡量隨機(jī)分布,避免嘧啶或嘌呤堆積,兩引物之間不應(yīng)有互補(bǔ)鏈存在,不能與非目的擴(kuò)增區(qū)有同源性。

    PCR反應(yīng)條件的選擇(影響因素)

    溫度參數(shù):

    1、變性:模板變性完全與否是PCR成功的關(guān)鍵,一般先于94℃(或95℃)變性3~10min,接著94℃變性30~60s。

    2、退火:退火溫度一般低于引物本身變性溫度5℃。引物長(zhǎng)度在15~25bp可通過(guò)公Tm=(G+C)×4℃+(A+T)×2℃計(jì)算退火溫度,一般退火溫度在40~60℃之間,時(shí)間為30~45s。如果(G+C)低于50%,退火溫度應(yīng)低于55℃。較高的退火溫度可提高反應(yīng)的特異性。

    3、延伸:延伸溫度應(yīng)在Taq酶的最適溫度范圍之內(nèi),一般在70~75℃。延伸時(shí)間要根據(jù)DNA聚合酶的延伸速度和目的擴(kuò)增片段的長(zhǎng)度確定,通常對(duì)于1kb以內(nèi)的片段1min是夠用的。

    循環(huán)數(shù):

    PCR的循環(huán)數(shù)主要由模板DNA的量決定,一般20~30次循環(huán)數(shù)較合適,過(guò)多的循環(huán)數(shù)會(huì)增加非特異擴(kuò)增產(chǎn)物,具體要多少循環(huán)數(shù)可通過(guò)預(yù)試驗(yàn)確定。

    PCR產(chǎn)物積累規(guī)律:

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